L’infertilité au sein d’un couple est évoquée si aucune grossesse ne survient après au moins 1 an de rapports réguliers, non protégés et pratiqués en période ovulatoire. Dans les pays occidentaux, près de 15 % des couples consultent pour des problèmes d’infertilité. Dans environ la moitié des cas, des facteurs d’infertilité sont diagnostiqués du côté masculin. L’asthénozoospermie, fréquemment retrouvée parmi ces facteurs, désigne une diminution ou une absence de la mobilité des spermatozoïdes (avec un taux de spermatozoïdes mobiles inférieur à 50 % moins d’une heure après I ‘éjaculation, selon les normes OMS) [1].

Il est vraisemblable qu’une composante génétique soit fréquemment en cause dans les infertilités masculines. Cependant, très peu de gènes ont pu être individuellement identifiés comme étant la cible de mutations altérant la fertilité chez l’homme. Ces dernières années, la connaissance des déterminants génétiques de la fertilité mâle a néanmoins connu une avancée considérable grâce au développement de modèles murins d’infertilité.

Infertilité des souris mâles par asthénozoospermie et anomalies de l’annulus

L’annulus est une structure fibrillaire sous-membranaire, en forme d’anneau et située à la jonction des pièces intermédiaire (PI) et principale (PP) du flagelle des spermatozoïdes (Figure 1). Bien que l’annulus soit décrit depuis plusieurs dizaines d’années, sa fonction reste encore indéterminée.

Figure 1 Structure du spermatozoïde. On distingue au niveau du flagelle du spermatozoïde des mammifères : la pièce intermédiaire (PI), la pièce princi pale (PP) et la pièce terminale. La PI est constituée d’une gaine de mitochondries. L’annulus se situe à la jonction PI/PP.

Les protéines TAT1 (testis anion transporter 1) et septine 4 (SEPT4) ont récemment été décrites comme des protéines flagellaires localisées, chez l’homme et chez la souris, au niveau de l’annulus des spermatozoïdes [2-4, 7]. L’inactivation chez la souris des gènes Tat1 ou Sept4 conduit à deux modèles d’asthénozoospermie très similaires. Ainsi, les mâles Tat1^-/- et Sept4^-/- sont totalement stériles. Leurs spermatozoïdes sont immobiles et présentent, au niveau de la région de l’annulus, un amincissement du flagelle et une plicature à 180°. L’annulus est atrophié et détaché de la membrane dans les spermatozoïdes Tat1^-/-; il est totalement absent dans les spermatozoïdes Sept4^-/- [2–4].

L’ensemble de ces données suggère fortement un rôle de l’annulus dans la mobilité des spermatozoïdes et la fertilité chez la souris.

Un cas inédit d’asthénozoopermie humaine associée à une absence d’annulus

Nous avons recherché des défauts de l’annulus chez des patients asthénozoospermiques en analysant l’expression de la protéine TAT1 qui, comme la protéine SEPT4, constitue un marqueur de l’annulus. L’étude de 75 sujets asthénozoospermiques a été réalisée par immunofluorescence sur frottis de sperme brut. Ce crible a permis d’isoler un sujet asthénozoospermique présentant une absence de marquage de la protéine TAT1 à l’annulus dans 97 % des spermatozoïdes observés (Figure 2A) [5].

Figure 2 Analyse des spermatozoïdes du patient. A. Les protéines TAT 1 (haut) et SEPT 4 (bas) sont détectées par immunofluorescence sur frottis de sperme brut provenant d’un sujet témoin sans asthénozoospermie (gauche) ou du patient (droite). Les protéines d’intérêt sont marquées en vert, les mitochondries de la PI en rouge et l’ADN de la tête des spermatozoïdes en bleu. Dans chaque cas, la région de l’annulus d’un spermatozoïde est agrandie. Aucune des protéines étudiées n’est détectée à l’annulus dans 97 % des spermatozoïdes du patient. B. L’ultrastruture est analysée par observation en microscopie électronique d’un culot de spermatozoïdes provenant d’un sujet témoin sans asthénozoospermie (gauche) ou du patient (droite). Les différentes parties du spermatozoïde sont indiquées pour le témoin : tête ; pièce intermédiaire (PI) ; pièce princi pale (PP) ; annulus (structure dense aux électrons, triangulaire, accolée à la membrane et signalée par un astérisque). Les anomalies des spermatozoïdes du patient sont signalées par des flèches : défaut de la gaine de mitochondries (1), disjonction PI/PP (2), absence d’annulus (3). Chaque barre d’échelle représente 0,5 μm.

Le patient était âgé de 31 ans et marié depuis plus de 3 ans. Le couple a consulté pour suspicion d’infertilité après 10 mois de rapports réguliers non féconds. Le patient présentait une asthénozoospermie modérée mise en évidence par trois spermogrammes distincts qui indiquaient respectivement 35 %, 30 % et 25 % de spermatozoïdes mobiles (valeurs inférieures à la norme de 50 % fixée par l’OMS).

Les spermatozoïdes du patient présentent, en plus de l’absence de protéine TAT1, une absence de protéine SEPT4 à l’annulus, suggérant une absence complète de cette structure (Figure 2A). L’analyse ultrastructurale des spermatozoïdes par microscopie électronique confirme l’absence d’annulus et indique également une disjonction PI/PP du flagelle et des anomalies de la gaine mitochondriale (Figure 2B).

Les anomalies de structure des spermatozoïdes chez ce patient (absence de l’annulus et disjonction PI/PP du flagelle) sont similaires à celles observées chez les souris invalidées pour le gène Sept4, démontrant que chez l’homme, comme chez la souris, l’intégrité de l’annulus est nécessaire à la mobilité des spermatozoïdes [5].

Ces anomalies conduisent néanmoins à des degrés d’asthénozoospermie très différents ; ainsi l’athénozoospermie est modérée chez le patient alors qu’elle est totale chez la souris Sept4^-/-. Ceci pourrait être lié à des différences de maturation des spermatozoïdes et/ou à une fragilité particulière du flagelle des spermatozoïdes de souris.

Discussion

Les résultats de notre étude suggèrent une association entre l’absence d’annulus et les asthénozoospermies humaines. Une étude concomitante réalisée sur une cohorte de 33 patients d’origine japonaise a également mis en évidence cette association avec, cependant, une fréquence beaucoup plus élevée (30 %) [6]. Dans les deux cas, la taille des cohortes analysées reste relativement faible. L’analyse d’un nombre plus important de patients asthénozoospermiques sera donc nécessaire pour fournir une meilleure estimation de cette association. Si celle-ci est confirmée et si sa fréquence s’avère non négligeable, l’absence d’annulus pourrait, à terme, servir de marqueur diagnostique d’une catégorie d’asthénozoospermies.

Par ailleurs, il est possible que les anomalies de l’annulus mises en évidence chez ce patient résultent de mutations dans un ou plusieurs gènes codant pour des composants de cette structure. À ce jour, sept protéines (dont les protéines TAT1 et SEPT 4) ont été localisées au niveau de l’annulus. Ainsi, les gènes codant pour ces protéines constituent des candidats de premier choix pour rechercher d’éventuelles mutations. L’annulus a été observé en microscopie électronique par Holstein dès 1975, mais garde encore tous ses mystères. Nos travaux chez l’homme et la souris apportent les toutes premières pistes pour comprendre son rôle dans la physiologie du spermatozoïde et sa contribution dans la fonction de reproduction.

Conflit d’intérêts

Les auteurs déclarent n’avoir aucun conflit d’intérêts concernant les données publiées dans cet article.

Références

© 2010 médecine/sciences - Inserm / SRMS

Liste des figures

	Figure 1 Structure du spermatozoïde. On distingue au niveau du flagelle du spermatozoïde des mammifères : la pièce intermédiaire (PI), la pièce princi pale (PP) et la pièce terminale. La PI est constituée d’une gaine de mitochondries. L’annulus se situe à la jonction PI/PP.
Dans le texte

Figure 2 Analyse des spermatozoïdes du patient. A. Les protéines TAT 1 (haut) et SEPT 4 (bas) sont détectées par immunofluorescence sur frottis de sperme brut provenant d’un sujet témoin sans asthénozoospermie (gauche) ou du patient (droite). Les protéines d’intérêt sont marquées en vert, les mitochondries de la PI en rouge et l’ADN de la tête des spermatozoïdes en bleu. Dans chaque cas, la région de l’annulus d’un spermatozoïde est agrandie. Aucune des protéines étudiées n’est détectée à l’annulus dans 97 % des spermatozoïdes du patient. B. L’ultrastruture est analysée par observation en microscopie électronique d’un culot de spermatozoïdes provenant d’un sujet témoin sans asthénozoospermie (gauche) ou du patient (droite). Les différentes parties du spermatozoïde sont indiquées pour le témoin : tête ; pièce intermédiaire (PI) ; pièce princi pale (PP) ; annulus (structure dense aux électrons, triangulaire, accolée à la membrane et signalée par un astérisque). Les anomalies des spermatozoïdes du patient sont signalées par des flèches : défaut de la gaine de mitochondries (1), disjonction PI/PP (2), absence d’annulus (3). Chaque barre d’échelle représente 0,5 μm.

Dans le texte