Open Access

Tableau I.

Techniques utilisées pour étudier le mécanisme de levée de pause transcriptionnelle. FRAP : fluorescence recovery after photobleaching ; FRET : Förster resonance energy transfer ; FICS : FRET image correlation spectroscopy ; sptPALM : single particle tracking photo-activated localization microscopy ; ChIP-Seq : chromatin immunoprecipitation sequencing ; RNA-Seq : ribonucleic acid sequencing ; GRO-Seq : global run on sequencing ; TT-Seq : transient transcriptome sequencing ; NET-Seq : native elongating transcript sequencing.

Technique Avantages Inconvénients
Biochimie (élution de fractions, co-immunoprécipitation) Détermination des complexes supramoléculairesPuissance statistique (grand nombre d’événements) Détection d’interactions indirectesMoyennage des comportements

Microscopie de fluorescence(FRAP, sptPALM) Mesures en cellules vivantes de la diffusion des protéinesSuivi de particules uniques en super-résolution Besoin de protéines et/ou de locus ectopiquesCoûteux en temps, besoin d’un grand nombre de mesures pour avoir une puissance statistique satisfaisante

Microscopie de fluorescence(FRET, FICS) Mesures et cartographie en cellules vivantes des interactions entre protéines Besoin de protéines ectopiquesCoûteux en temps, besoin d’un grand nombre de mesures pour avoir une puissance statistique satisfaisante

ChIP-Seq Immunoprécipitation de différentes formes de la polymérase, sur le génome entier Bruit de fond important

RNA-Seq Détection de l’ensemble des ARN Sensibilité relativement faible

GRO-Seq Mesures des ARN naissants Systèmes d’induction nécessaires

TT-Seq Très sensible pour détecter les ARN peu stables Détection des ARN synthétisés sur une courte période (5 minutes); pas de détection de transcrits « en pause »

NET-Seq Détection des zones de pause de la polymérase, de formes d’épissage Non détection des ARN de taille < 35 nucléotides; possible poursuite d’élongation lors du protocole; dégradation possible des ARN

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