Caractérisation fonctionnelle de la niche artificielle. A.  Résultats de l’imagerie non-invasive de la bioluminescence in vivo (1) de cellules satellites quiescentes (CSQ) fraîchement isolées, (2) activées in vivo par lésion induite par la cardiotoxine (CSA), ou (3) de myoblastes cultivés (MB). Ces cellules expriment le transgène de la luciférase et ont été transplantées (10 000 cellules pour chaque condition) dans le muscle tibial antérieur de souris préalablement blessées à la cardiotoxine. Les myoblastes cultivés montrent une perte importante de leur potentiel régénératif (n = 6 répliques biologiques ; comparaison de CSQ et CSA : *P < 0,05 ; **P < 0,001 ; ***P < 0,0001). B.  Résultats de l’analyse en composantes principales (CP1, CP2) des profils d’expression monocellulaires des cellules satellites cultivées associées à des myofibres artificielles (MA) ou sur substrat plastique (S), et cultivées en présence de milieu de culture de quiescence (MQ) ou de croissance (MC) et comparés avec ceux des cellules satellites quiescentes et activées in vivo. Les nuages et les lignes de contours représentent la densité des distributions monocellulaires ; les couleurs indiquent les différentes populations de cellules satellites et leurs conditions de culture respectives. Seule la combinaison de MA et de MQ dans les conditions de culture permet de maintenir un état de quiescence des cellules similaire à celui des cellules quiescentes fraîchement isolées (adapté de [2]).