Le complexe protéique Elongator est nécessaire au développement des organes sensoriels de la mouche. A. Lignage simplifié des cellules précurseurs des organes sensoriels (sensory organ precursor cells, ou cellules SOP). B. Le complexe protéique Elongator contrôle l'asymétrie du fuseau mitotique de la cellule SOP au cours de sa division. Cette cellule se divise pour générer deux cellules filles, pIIa et pIIb. Dans des conditions physiologiques (« Témoin »), à la fin de la division, le fuseau mitotique est asymétrique : il y a plus de microtubules du côté de la future cellule pIIb que du côté de la cellule pIIa. Cette asymétrie est perdue lors du traitement de la cellule SOP par un ARN interférent ciblant la sous-unité Elp3 (Elp3 ARNi), et elle est rétablie par la réexpression de cette sous-unité grâce à un variant d'Elp3 résistant au ARNi (Elp3 ARNi + Elp3*). Les microtubules sont visualisés et quantifiés grâce à la fluorescence du marqueur Jupiter-GFP (green fluorescent protein). C. Le complexe Elongator contrôle la répartition des endosomes possédant à leur surface la protéine Sara entre les deux cellules filles, pIIa et pIIb. Des anticorps fluorescents contre Delta et mRFPPon (fusion entre la protéine Pon, qui marque spécifiquement la membrane de la cellule pIIb, et la protéine à fluorescence rouge RFP) sont utilisés comme marqueurs des endosomes contenant Sara et du cortex de la cellule pIIb, respectivement. Lors du traitement des cellules SOP par Elp3 ARNi, les endosomes sont anormalement répartis de manière symétrique entre les cellules pIIa et pIIb (flèches orange). D. Développement anormal des organes sensoriels (« poils ») en l'absence du complexe Elongator. Images du thorax d'une mouche adulte (vue antérieure) par microscopie électronique à balayage. Barres d'échelle : 2 μm (B), 5 μm (C), et 200 μm (D).