Réponse des cellules épithéliales à un changement global de forme par induction de courbure du tissu. A. Schéma de la bicouche de polydiméthylsiloxane (en jaune et magenta) enroulée spontanément à la suite de sa découpe, qui est facilitée par une couche de polydiméthylsiloxane (en bleu foncé) déposée sur une lamelle de verre (en bleu clair). La monocouche de cellules épithéliales (en rose) adhère au support par l’intermédiaire de la protéine fibronectine (vert). B..Vues sagittales par microscopie en fluorescence (membrane cellulaire colorée en magenta, noyau cellulaire coloré en cyan) d’une région plane (en bas) et d’une région enroulée 5 minutes après l’enroulement (en haut), montrant le gonflement des cellules du côté apical. Barre d’échelle : 20 µm. C. Segmentation des cellules pour quantifier le volume cellulaire par l’emploi du module d’extension de logiciel LimeSeg [12]. Barre d’échelle : 20 µm. D. Quantification du volume cellulaire au cours du temps après enroulement du tissu (ronds : région enroulée ; carrés : région plane). Points et barres verticales : moyenne pondérée ± erreur standard pondérée avec les poids calculés sur la variance. E. Variation Δ entre la valeur initiale (T_i) et finale (T_F) du temps d’émission de fluorescence, qui est proportionnel à la tension membranaire, mesuré par la sonde Flipper-TR^TM au cours du temps après enroulement. Le temps « 0 » représente la zone plane avant enroulement. Points et barres verticales : moyenne ± écart-type. F. Rapport d’intensité de fluorescence de l’actine entre les parties apicale et basolatérale des cellules au cours du temps après enroulement. Le temps « 0 » représente la zone plane avant enroulement. Points et barres verticales : moyenne ± écart-type.