Figure 1.

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A. Combiner étirement cellulaire et microscopie de super-résolution. Une cellule exprimant la vimentine, une protéine composant les filaments intermédiaires du cytosquelette, imagée par microscopie en fluorescence conventionnelle, avant (en vert, à gauche) et après (magenta, au milieu) un étirement cellulaire de forte amplitude (35 %), puis avec la microscopie de super-résolution (DNA-PAINT, à droite). L’image super-résolue de la région limitée par le trait en pointillé (au milieu) montre les filaments de vimentine après l’étirement cellulaire. On peut apprécier le gain de détail et de résolution spatiale dans cette image par rapport à l’image de la même zone obtenue par la microscopie conventionnelle en fluorescence (en insert, à droite), ce qui permet d’étudier les changements d’organisation des protéines du cytosquelette à l’échelle nanométrique. B. Combiner étirement cellulaire et traçage de protéines uniques. Réponse inélastique de la taline soumise à des forces d’étirement correspondant au dépliement de la protéine. Traçage de protéines uniques (taline) dans une cellule pendant un étirement cellulaire d’amplitude modérée (4 %, à gauche). Kymographe représentant horizontalement l’espace le long de la ligne 1, et verticalement, le temps permettant de décrire la réponse dynamique de la taline (en cyan) lors d’un cycle d’étirement du substrat suivi au moyen de billes adsorbées (en rouge). La taline peut présenter des réponses élastiques durant lesquelles elle suit le déplacement du substrat (forme en trapèze), ou des réponses inélastiques (forme parabolique) durant lesquelles elle continue son mouvement alors même que le substrat n’est plus étiré. Schéma illustrant ce dernier type de réponse avec la déformation de la taline (taline-Cter, en cyan) induite par l’étirement du substrat (points blancs et rouges), auquel la cellule est ancrée par les intégrines (points noirs).
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