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Table 1.

Méthodes de déconvolution existantes de la plus ancienne à la plus récente.

Méthodes Principes Avantages Inconvénients Références
Par chromatographie d'affinité Petite molécule modifiée immobilisée sur colonne. Incubation avec extrait protéique d'intérêt. Séparation par élution et identification par spectrométrie de masse ou immunodétection Simple à mettre en place. Cible retenue dans des conditions physiologiques Modification de la petite molécule : gêne stérique? Activité biologique conservée ? Molécule de très haute affinité nécessaire. Forte concentration de protéine cible obligatoire [18]

Par expression de clones (phage display, système triple-hybride, banques d'ADNc) Expression de protéines cibles potentielles en système hétérologue et crible de la molécule d'intérêt marquée Permet de détecter les protéines faiblement abondantes Expression de protéines modifiées dans des systèmes simples (levure, phage) : QUID de la structure/modifications post traductionnelles (MPT), etc. Phage display : [19, 20] Y3H : [2123]

Puce à protéines La molécule d'intérêt fluorescente ou radiomarquée est incubée avec les puces de protéines. Les protéines ainsi marquées sont identifiées selon leur position Permet une analyse à haut débit des interactions protéine / molécule. Pas de problème de faible abondance Position de la protéine : liera-t-elle encore la molécule? Modification chimique de la petite molécule (activité…). Protéines isolées : QUID de la structure / MPT ? [25]

Puce à cellules Expression d'ADNc définis dans des cellules sur des puces. Incubation avec la molécule d'intérêt fluorescente ou radiomarquée Criblage de milliers d'ADNc possible. Système stable sur le long-terme Variation d'efficacité de transfection. Ratio signal/bruit suffisant ? [26]

Suppression biochimique Suppression fonctionnelle de l'inhibition chimique in vitro. Mélange molécule/extrait protéique : activité. Des fractions de cet extrait sont administrées pour supprimer cette activité et les fractions induisant la suppression d'activité sont ensuite déconvoluées Les molécules de faible affinité peuvent être testées Développement d'un test fonctionnel nécessaire. Peut mener à l'identification d'une protéine de la voie de signalisation [27]

Technique d'organisation nématique de protéines (NPOT®) Méthode d'hétéroassemblage par incubation de lysats tissulaires et de la molécule d'intérêt, isolement de l'interactome, digestion enzymatique et identification des partenaires par LC-MS/MS des peptides digérés Structure quaternaire conservée. Accès au mécanisme d'action de la molécule. Possible prédiction des effets secondaires Risque de non identification de la cible si digestion enzymatique imparfaite. Méthode brevetée, seulement effectuée par une PME [28]

CETSA (Cellular Thermal Stability Assay), DARTS (Drug Affinity Response Target Stability) Mesure de la stabilisation d’une protéine en réponse à un ligand Pas de modification chimique La stabilisation thermodynamique doit être suffisante pour être détectable [29]

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