Marquage d’embryons de xénope à différents stades du développement avec des quantum dots (QD). Localisation cellulaire spécifique des QD. A. Schéma donnant la stratégie expérimentale. Des micelles de QD sont injectées dans une cellule d’un embryon de huit cellules. Entre 1,5 et 3 nl d’une suspension de QD (2,3 μm) sont injectés, ce qui correspond à 2.1x10⁹ et 4.2x10⁹ particules injectées dans une cellule. Les embryons sont ensuite cultivés et visualisés à différents stades du développement. B-E. Une image de transmission et une image de fluorescence ont été super-imposées. B. Injection d’une cellule d’un embryon de huit cellules permettant de marquer un seul blastomère. C. Même embryon une heure après. D. Embryon neurula. Ici aussi, une seule cellule d’un embryon à huit cellules a été injecté. F. Marquage intracellulaire d’un axone (flèche) et de somites d’un têtard au stade de développement 40. G. QD localisés dans le noyau pendant les stades mid-blastula. Cette localisation s’atténue plus tard. H. Cellules marquées de la crête neurale migrant dans les branchies. I. Fluorescence des QD observées dans l’estomac de l’embryon. Barres: B-E, H, I : 0,5 mm; F, G : 30 μm. Les images fluorescentes sont obtenues avec le jeu de filtre 41015 Chroma (GFP sauvage, émission passe-haut et une excitation passe-bande de 50 nm de large centrée sur 450 nm) monté sur un microscope Zeiss. Les échantillons sont excités avec une lampe au mercure de 50 W. Les images sont enregistrées avec une caméra couleur digitale (AxioCam HR, Zeiss). Dans ces expériences, les QD ont un diamètre de 3,5 nm, leur coeur est en CdSe, leur croûte en Zn/S. Ces QD absorbent les radiations avec une longueur d’onde < 515 nm et émettent aux alentours de 550 nm.