> La formation du système nerveux des
vertébrés débute au moment de la gastrulation avec l’induction et
la formation de la plaque neurale sur la face dorsale de l’embryon.
C’est en fin de gastrulation, au sein de la plaque neurale que se
différencieront les neurones primaires.
Au stade blastula et jeune
gastrula (7 à 9 heures après la fécondation),
l’ectoderme de l’amphibien Xenopus laevis peut évoluer vers
un destin épidermique ou neural. Les travaux de la dernière
décennie ont montré que l’ectoderme se détermine en épiderme en
réponse à l’activation de la voie de signalisation BMP4 et prend un
destin neural lorsque cette voie est inhibée par des facteurs
secrétés par le mésoderme dorsal, tels que noggin, chordin ou
follistatine. L’induction neurale se ferait donc selon un mécanisme
« par défaut », qui ne nécessiterait que l’inhibition de
la voie BMP4 et ne conduirait pas à l’activation d’une cascade de
transduction spécifique [1].
Ce modèle, bien que largement admis, présente
des limites. Il a été principalement établi à partir d’expériences
réalisées sur des ectodermes isolés et jamais sur l’embryon entier.
Le modèle d’induction neurale « par défaut » n’est pas
généralisable à l’embryon de poulet ou d’ascidie où l’induction
neurale nécessite un signal instructif faisant, entre autres,
intervenir la voie de signalisation FGF [2]. Des résultats
récents obtenus sur l’embryon de xénope montrent que la répression
de la voie de signalisation BMP4 est requise pour supprimer le
destin épidermique mais qu’elle n’est pas suffisante pour induire
le destin neural [3].
Nous nous intéressons aux voies de signalisation
calcium-dépendantes qui contrôlent les phases précoces de la
formation du système nerveux chez l’amphibien. Par des techniques
d’imagerie calcique, associées à des approches de biologie
cellulaire et moléculaire, nous avons montré que le calcium joue un
rôle crucial dans la transduction du signal neuralisant via
des canaux calciques potentiel-dépendant sensibles aux
dihydropyridines (DHP) [4, 5].
Ainsi dans l’embryon de xénope, depuis le stade
blastula (stade 8) jusqu’à la fin de la gastrulation (stade
13-14), il se produit des variations de calcium spontanées et
transitoires [6, 7]. Ces variations sont restreintes à l’ectoderme
dorsal et l’inhibition de ces variations transitoires, soit par le
BAPTA (un chélateur de calcium), soit par un antagoniste des canaux
Ca2+ sensibles aux DHP, perturbe l’induction neurale et
inhibe l’expression de gènes proneuraux comme Zic3. De plus,
appliqué sur des ectodermes isolés, le facteur neuralisant noggin
provoque une augmentation de calcium intracellulaire
([Ca2+]i) via l’activation de canaux
Ca2+ sensibles aux DHP (figure 1C). Certains
facteurs de transcription sont des cibles privilégiées du calcium.
Ainsi le gène c-fos est activé pendant l’induction neurale,
qu’elle soit déclenchée par noggin ou par une augmentation de
[Ca2+]i [8]. Deux gènes proneuraux, XlPOU2 et
Zic3 (Zinc finger protein of cerebellum 3), sont
également activés à la suite de la stimulation de l’ectoderme par
noggin ou par une variation de [Ca2+]i, qu’elle soit
induite par les DHP ou par la caféine. Inversement, le blocage des
signaux calciques inhibe l’expression des gènes proneuraux [9,
10].
Nos résultats montrent que le calcium est
nécessaire et suffisant pour déterminer les cellules de l’ectoderme
dans la voie neurale. Nous avons recherché des gènes précoces de la
détermination neurale contrôlés par le calcium. Grâce à une banque
soustractive d’ADNc, réalisée à partir d’ectodermes isolés induits
par une augmentation de [Ca2+]i provoquée par la caféine
versus non induits (Figure 1A), nous avons
sélectionné une trentaine de gènes précoces contrôlés par le
calcium et qui s’expriment dans les futurs territoires neuraux
[11]. Nous avons plus particulièrement porté notre attention sur
une arginine N-méthyl-transférase, xPRMT1b. Nos expériences ont été
réalisées à la fois sur des ectodermes isolés et sur des embryons
in toto [12].

Figure 1. Identification du
gène codant pour une arginine N-méthyl-transférase de type I,
xPRMT1b, à partir d’une banque soustractive réalisée entre des
ectodermes induits par une augmentation de [Ca2+]i
provoquée par la caféine et des ectodermes non induits. A.
Principe de l’expérience : l’ectoderme ou calotte animale est
prélevé au stade blastula. B. Expression de
xPRMT1b détectée par hybridation in situ en début de
gastrulation (stade 10.5, l’encoche blastoporale est vers le haut)
et en fin de gastrulation (stade 12, partie antérieure vers le
haut). À ce stade, l’expression de xPRMT1b est restreinte à
la plaque neurale (échelle 0,5 mm). C.
L’inducteur neural noggin provoque une augmentation de
[Ca2+]i inhibée par la nifédipine, antagoniste des
canaux calciques sensibles aux dihydropyridines (encart).
D. noggin induit l’expression de xPRMT1b
selon un mécanisme calcium-dépendant : le BAPTA (chélateur de
calcium) réduit fortement cette expression.
E. La surexpression dans les cellules de
l’ectoderme d’un récepteur non fonctionnel de BMP4 (tBR), conduit à
l’inhibition de la voie de détermination épidermique et oriente les
cellules vers un destin neural. L’expression de xPRMT1b
induite dans ces conditions est réduite en présence de BAPTA
(échelle D, E : 0,2 mm).
Sur les ectodermes isolés, l’expression de
xPRMT1b est induite par une augmentation de
[Ca2+]i provoquée soit par la caféine, soit par
l’inhibition de la signalisation BMP par noggin, soit par
l’expression d’un récepteur BMP4 non fonctionnel (tBR). Dans ces
deux derniers cas, elle est inhibée spécifiquement par le BAPTA
(Figure 1D, E). Nous avons également montré que
xPRMT1b est un gène de réponse directe à l’augmentation de
[Ca2+]i car son expression en présence de caféine ne
nécessite pas de synthèse de protéines de novo.
Par hybridation in situ, nous avons suivi
dans l’embryon in toto le profil d’expression
spatio-temporel de xPRMT1b. L’ARN messager de xPRMT1b
est détecté dès le début de la gastrulation, dans tout l’ectoderme
ainsi que dans le mésoderme dorsal. Son expression est ensuite
restreinte aux territoires neuraux dans les stades plus tardifs
(Figure 1B). Les antagonistes des canaux Ca2+
sensibles aux DHP inhibent l’expression de xPRMT1b.
L’expression de xPRMT1b dans l’embryon résulte donc d’une
entrée de calcium par les canaux Ca2+ sensibles aux
DHP.
Le rôle de xPRMT1b au cours de l’induction
neurale a été abordé par gain (surexpression de l’ARN messager) et
perte de fonction (approche morpholino) [13]. Le messager de
xPRMT1b est injecté dans l’embryon au stade 2 cellules, puis
l’ectoderme est isolé au stade blastula et l’expression de
marqueurs neuraux est analysée par RT-PCR. xPRMT1b induit
l’expression de gènes précoces impliqués dans la détermination
neurale de l’ectoderme (Zic3 et Neurogenine) ainsi
que de marqueurs de détermination (Engrailed2 et
N-CAM) et de différenciation neurale (N-tubuline). En
présence de cycloheximide, l’expression de Zic3 est
maintenue, tandis que l’expression d’Engrailed2 est inhibée.
Cela démontre que Zic3 est une cible directe de xPRMT1b,
alors que l’expression d’Engrailed2 nécessite une synthèse
protéique. L’expression des marqueurs neuraux induite par une
augmentation [Ca2+]i est fortement réduite dans les
ectodermes isolés à partir d’embryons injectés avec un morpholino
contre xPRMT1b. Dans l’embryon, la perte de fonction de xPRMT1b par
injection de morpholino contre xPRMT1b bloque le développement de
la partie antérieure du système nerveux. Ces résultats suggèrent
que l’enzyme xPRMT1b est un lien direct entre l’augmentation de
calcium intracellulaire et les événements en aval de l’induction
neurale.
Nos travaux permettent de donner la première
évidence de l’expression tissu-spécifique d’une arginine
N-méthyl-transférase dans un système intégré et de moduler le
concept d’induction neurale par défaut (Figure 2). Nous
suggérons qu’un mécanisme instructif dépendant du calcium est
nécessaire pour orienter les cellules de l’ectoderme vers un destin
neural [4]. ‡

Figure 2. Modèle instructif
d’induction neurale. L’inactivation de la voie de
signalisation du facteur BMP4 par noggin est requise pour orienter
les cellules de l’ectoderme vers un destin neural. Cependant dans
l’embryon cette inhibition n’est pas suffisante. Une augmentation
de [Ca2+]i est nécessaire pour induire l’expression de
xPRMT1b et activer des gènes neuraux précoces comme
Zic3 ou XlPOU2 [6]. Le calcium entre par des canaux
membranaires sensibles aux dihydropyridines et pourrait aussi agir
en réprimant la voie de transduction de BMP4. Les relations entre
les récepteurs de BMP4 et le canal calcique sont encore
inconnues
Références
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